虽然CRISPR-Cas9具有治疗前景,但更广泛的应用需要了解大量非编码区的并发症。
2026年2月24日,清华大学李寅青、张学工共同通讯在Cell Stem Cell(IF=20.4)在线发表题为Minimizing far-extending chromatin perturbation in genome editing preserves stem cell identity的研究论文。
该研究系统性揭示了 CRISPR/Cas9 基因编辑的潜在表观遗传风险:即便是在远离基因调控元件的非编码区进行编辑,也会引发大范围的染色质扰动,尤其可能导致成体干细胞、如神经干细胞等干性细胞丢失自身干性特性,发生提前分化。
基因组编辑已经在治疗严重遗传性疾病的临床试验中留下了足迹。随着该技术从医学干预扩展到有益的基因修饰,了解其潜在的并发症变得至关重要。到目前为止,安全性评估主要集中在基因编码区脱靶切割的诱变效应,留下了对大量非编码区的影响,这些影响在很大程度上是未知的。
非编码区占人类基因组的97%以上,包含无数的顺式调节元件(CREs ),这些元件通过CTCF依赖性或凝聚体依赖性长程染色质调节来维持细胞身份。相邻CREs之间的距离平均约为54 kb,中位数为5 kb,这表明非编码区的on和off-target切割通常发生在CRE的千碱基内。大量先前的研究已经探索了染色质如何影响基因编辑,而不是相反:基因组编辑如何影响染色质及其调控网络。
检查DNA损伤后染色质变化的早期研究报告了损伤部位的短暂分解,通常限制在2 kb的狭窄范围内,并以快速恢复为特征,表明长期后果有限。然而,这些研究主要依赖于广谱DNA损伤剂,如高频核酸酶,UV(紫外线)和IR(电离辐射),并在模型中进行,具有有限的生理相关性。可能没有完全捕捉到CRISPR-Cas9在多种细胞类型中进行靶向DNA编辑的影响,这凸显了理解中的一个关键差距。
机理模式图(图源自Cell Stem Cell)
该研究发现,CRISPR-Cas9可以导致体内神经干细胞和体外小鼠胚胎干细胞的过早分化,即使切割发生在距离最近的调控元件几十千个碱基的远处。为了对此进行研究,采用了转座酶可及染色质(ATAC)/RNA测序(AR-seq)方法的综合分析,并确定了编辑诱导的染色质可及性变化,其程度因细胞类型而异。
干细胞受影响最大,受到超过一百千个碱基的干扰。此外,即使是局部的DNA扰动也能破坏CTCF和凝聚体相关的染色质结构,导致远端转录重连,最终导致干细胞身份的丧失。为了最小化染色质扰动和保持细胞同一性,改进了基因编辑策略,包括距离感知的sgRNA设计、DNA切除的药理学衰减和替代编辑系统。这项工作为基因组编辑技术更安全、更广泛的应用铺平了道路。
该研究由清华医学,IDG 麦戈文脑科学研究所、药学院李寅青博士,自动化系张学工博士,朱明博士(现华东师范大学研究员)为共同通讯作者;朱明博士、袁俊松博士、孟秋辰博士、博士生余嘉伟、徐晓庆为共同第一作者。研究得到中国科学院遗传与发育研究所郭伟翔研究员,清华大学丁胜博士、马天骅博士、蓝勋博士、颉伟博士,以及斯坦福大学丛乐博士的大力支持。
参考消息:https://www.cell.com/cell-stem-cell/abstract/S1934-5909(26)00038-X#au25